Niektoré aspekty energetického metabolizmu myokardu. 2. časť. Ischemický myokard
VIERA RENDEKOVÁ, IVAN PECHÁŇ*
Bratislava, Slovenská republika

Z Ústavu lekárskej chémie, biochémie a klinickej biochémie Lekárskej fakulty Univerzity Komenského v Bratislave a z Katedry klinickej biochémie Slovenskej postgraduálnej akadémie medicíny v Bratislave*
Do redakcie došlo dňa 9. 2. 1999; prijaté 19. 6. 1999
Adresa pre korešpondenciu: Prof. MUDr. Ivan Pecháň,DrSc.*, Slovenský ústav srdcových a cievnych chorôb, Pod Krásnou hôrkou 1, 833 48 Bratislava


RENDEKOVÁ V, PECHÁŇ I. Niektoré aspekty energetického metabolizmu myokardu. 2. časť. Ischemický myokard. Cardiol 1999;8(6):320–324
V prehľadnej práci sa analyzujú problémy energetického metabolizmu ischemického myokardu. Kardiomyocyty sú mimoriadne citlivé na nedostatočnú dodávku kyslíka, a preto čiastočné obmedzenie (mierna až stredne ťažká ischémia) alebo kompletné zastavenie koronárneho krvného prietoku sprevádza postupný prechod na anaeróbny typ metabolizmu, pri ktorom myokard získava iba minimálne množstvá primárneho energetického zdroja ATP cestou anaeróbnej glykolýzy. Uvádzajú sa regulačné mechanizmy, ktoré umožňujú prechod od kardiomyocytmi preferovanej oxidácie viacuhlíkových karboxylových kyselín na anaeróbnu glykolýzu, ako aj dôsledky tohto procesu.
Kľúčové slová: energetický metabolizmus kardiomyocytov – vplyv čiastočnej ischémie – vplyv ťažkej ischémie – regulácia ciest energetického metabolizmu

RENDEKOVÁ V, PECHÁŇ I. Some aspects of myocardial energy metabolism. Part 2. Ischemic myocardium. Cardiol 1999;8(6):320–324
In this survey some problems of energy metabolism in ischemic myocardium are analyzed and discussed. Cardiomyocytes are extremely sensitive to insufficient oxygen supply and therefore the partial (mild to moderate ischemia) or total arrest of coronary blood flow are accompanied by a progressive shift from aerobic to anaerobic types of metabolic process. However, anaerobic conditions (anaerobic glycolysis) offer only minimal amounts of primary energy source – ATP through the anaerobic glycolytic pathway. The regulatory mechanism providing the shift from aerobically prefered fatty acid oxidation to the anaerobic glycolysis, as well as some consequences of this process, are discussed.
Key words: Energy metabolism of cardiomyocytes – Effects of partial ischemia – Effects of total ischemia – Regulation of energy metabolism pathways


Jedným z najčastejších patologických postihnutí srdcového svalu je jeho ischemizácia, ktorá – podľa svojej intenzity – viac alebo menej výrazne zasahuje do jeho metabolizmu a funkcie. Napriek tomu, že ischémia srdca je veľmi častým objektom štúdia na mnohých zvieracích modeloch aj v klinickej medicíne, stále sa iba konštatuje, že jej patogenetické mechanizmy sú zložité a ich značná časť zostáva stále v rovine predpokladov a hypotéz. Exaktné spoznanie týchto mechanizmov však nie je dôležité iba pre samotný ischemický myokard, ale i pre poischemické funkčné poruchy, ktoré sa označujú termínom „omráčený“ (stunned) myokard. Tento termín nepatrí už iba do oblasti zvieracích modelov, ale čoraz viac preniká i do klinickej praxe.

Pred štyrmi rokmi jedna z najväčších autorít v oblasti štúdia ischémie myokardu, David J. Hearse (1), požiadal viac ako tridsať skúsených teoretikov a klinikov-kardiológov z celého sveta o čo najstručnejšiu a pritom najvýstižnejšiu definíciu ischémie myokardu, ktorá by prekonala i hranicu medzi oboma storočiami. Najstručnejšia zaregistrovaná definícia mala iba tri slová, najvyčerpávajúcejšia až 404 slov. Pritom ani jedna z nich nedokázala definovať srdcovú ischémiu tak, aby vystihla to najpodstatnejšie, aby dostatočne zvýraznila najdôležitejšie patogenetické charakteristiky tejto morfologicky už dobre definovanej patologickej jednotky. Je charakteristické, že medzi Hearsom uvádzanými definíciami súčasných hlavných osobnosti srdcovej biochémie a fyziológie, ako aj kliniky sa stále uplatňuje i základná definícia Rudolfa Virchowa, vyslovená pred 140 rokmi, citovaná Hearsom, podľa ktorej termín ischémia vyjadruje následky obmedzeného prietoku krvi tkanivami.

Napriek evidentným problémom pri exaktnej definícii ischémie možno vychádzať z dvoch charakteristických rysov – zníženie alebo úplné zamedzenie dodávky kyslíka tkanivám a väčšia či menšia akumulácia odpadových metabolitov v závislosti od rozsahu uzavretia zásobujúcich ciev (2).

Nedostatočné zásobovanie tkaniva kyslíkom sa rýchlo prejaví presunom metabolizmu na anaeróbne podmienky, ktorých dôsledkom je hromadenie protónov (iónov vodíka), laktátu a anorganického fosfátu v kardiomyocytoch, čo funkčne sprevádza kontraktilná hypo- až akinéza srdca. Rýchlosť týchto metabolických a funkčných zmien závisí od stupňa ischemizácie srdcového svalu: pri globálnej ischémii nastáva prechod metabolizmu z aeróbneho na anaeróbny v časovom limite už niekoľkých sekúnd (3). Na rozdiel od globálnej ischémie, mierna ischémia vyvolaná obmedzením prietoku krvi koronárnymi artériami o 20 až 60 %, spôsobuje pri zníženej dodávke kyslíka (o 10 až 50 %) prechodnú závislosť myokardu od anaeróbnej glykolýzy, čo vyvoláva znižovanie zásob glykogénu, zvýšenú tvorbu laktátu a znižovanie oxidácie karboxylových kyselín, ako aj určitý stupeň kontraktilnej dysfunkcie myokardu (4).

Mierna a stredne ťažká ischémia myokardu

Vplyv parciálnej ischémie na metabolizmus myokardu sa intenzívne študoval na viacerých druhoch pokusných zvierat. Zníženie prietoku krvi koronárnymi artériami do 30 % zapríčiňuje rýchly pokles kontraktility myokardu, ktorá je dôsledkom najmä zníženia tvorby a zásob energeticky bohatých zlúčenín – ATP a fosfokreatínu prechodom na anaeróbnu glykolýzu. Toto sa spája s  prechodným uvoľňovaním laktátu z kardiomyocytov a čiastočným znížením podielu oxidácie viacuhlíkových karboxylových kyselín na získavaní energie. Pozoruhodné je, že oxidácia viacuhlíkových karboxylových kyselín zostáva naďalej hlavným energetickým zdrojom (5, 6). Po 30 – 90-minútovej miernej ischémii sa znižuje vyplavovanie laktátu z  tkaniva a čiastočne sa obnovujú zásoby ATP a kreatínfosfátu. Kontraktilita myokardu zostáva však naďalej znížená (7, 8).

Prehlbovanie ischémie ďalším znižovaním prietoku krvi koronárnymi artériami postupne zvyšuje podiel glukózy a glykogénu na tvorbe energetických zdrojov myokardu. Vyvoláva to predovšetkým ďalšie znižovanie ponuky kyslíka bezpodmienečne potrebného pre ß-oxidáciu karboxylových kyselín v mitochondriách. Toto presmerovanie metabolických ciest pri získavaní energie kardiomyocytom sa reguluje viacerými mechanizmami (obrázok 1):

· nižšia koncentrácia acetyl-CoA vytváraného oxidáciou karboxylových kyselín, ako aj zvyšovanie množstiev NADH2, ktorý sa vzhľadom na klesajúcu ponuku kyslíka nedokáže v potrebnom rozsahu oxidovať v mitochondriálnom dýchacom reťazci na NAD+, vedie k spomaleniu reakcií citrátového cyklu a tým i k zníženiu koncentrácie citrátu, čím sa oslabí jeho inhibičné pôsobenie na fosfofruktokinázu,

· klesajúca kapacita procesov oxidačnej fosforylácie spôsobuje pokles intramitochondriálnej tvorby ATP a hromadenie produktov jeho štiepenia – adenozíndifosfátu a anorganického fosfátu. Tieto metabolity – na rozdiel od ATP – aktivujú fosfofruktokinázu (9),

· hromadiaci sa NADH2 je aktivátorom špecifickej proteínkinázy, ktorá katalyzuje fosforyláciu pyruvátdehydrogenázy, čím dochádza k jej inaktivácii (10),

V ischemizovanom myokarde tieto regulačné mechanizmy otvárajú cestu procesu anaeróbnej glykolýzy, ktorá zabezpečuje tvorbu minimálneho množstva molekúl ATP substrátovou fosforyláciou. Ide o tzv. glykolytické ATP, ktoré je určené predovšetkým, na udržanie základných funkcií bunkových membrán počas výraznej ischémie (2) – ich elektrogenézu, otváranie sodíkových a od ATP závislých draslíkových kanálov a ich ďalších funkcií.

Predpokladom pre anaeróbnu glykolýzu je dostatočné množstvo potrebných substrátov – glukózy a zásobného glykogénu. Hoci parciálna ischémia myokardu znižuje ponuku glukózy a jej hladinu v extracelulárnom priestore (11), jej vychytávanie myocytmi sa podstatne zvyšuje (12). Tento paradox sa podarilo vysvetliť Youngovi a spolupracovníkom (13): v srdci psa, vystaveného ischémii v dôsledku zníženého prietoku krvi koronárnymi artériami, dochádzalo k výraznej translokácii glukózových prenášačov (GLUT-1 a GLUT-4) z intracelulárneho prostredia do sarkolemálnej membrány. Znamená to vlastne kompenzačný mechanizmus reagujúci na nedostatočnú ponuku glukózy z extracelulárneho prostredia. Rovnaký efekt na presun glukózových transportérov zo sarkoplazmového retikula do sarkolemálnej membrány má inzulín (14, 15). Inzulín okrem toho priamo zasahuje i do vlastného metabolizmu glukózy: aktivuje a uvoľňuje enzým hexokinázu z  vonkajšej mitochondriovej membrány, čím podporuje fosforyláciu glukózy a tým i tvorbu jej aktívnej formy glukóza-6-fosfátu (16), zasahuje aj do procesov syntézy (aktivuje glykogénsyntázu) a uskladnenia glykogénu (17). Možno teda povedať, že prienik glukózy do bunky a jej ďalší osud sa reguluje na viacerých miestach: pri jej transporte do bunky, aktivitou hexokinázy, intenzitou zabudovania jej aktívnej formy – glukóza-6-fosfátu do molekúl glykogénu, ale aj na ďalších miestach glykolytického spôsobu cesty oxidácie glukózy (12).

Miernu a stredne ťažkú ischémiu myokardu charakterizuje teda postupný pokles podielu oxidácie viacuhlíkových karboxylových kyselín a zvyšovanie zastúpenia oxidácie glukózy pri zabezpečovaní energetického zdroja kardiomyocytov. Treba však zdôrazniť, že oxidácia karboxylových kyselín i naďalej zostáva primárnym zdrojom energeticky bohatých látok v kardiomyocytoch. V pokusoch na prasiatkach sa ukázalo, že i pri 60 % obmedzení prietoku krvi koronárnymi artériami oxidácia karboxylových kyselín – popri postupnom znižovaní jej intenzity – ostáva i naďalej dodávateľom prevažnej časti energie pre syntézu ATP v kardiomyocytoch, a to i pri výraznej kontraktilnej dysfunkcii, zníženej myokardiálnej spotrebe kyslíka a pri narastajúcej tvorbe laktátu (4). Prispieva k tomu i pokračujúca tioesterifikácia karboxylových kyselín s CoA, čo umožňuje najmä vysoká afinita ATP pre acyl-CoA-syntetázu (18).

Ťažká ischémia myokardu

O ťažkej ischémii myokardu možno hovoriť, ak sa prietok krvi koronárnymi artériami zníži o viac ako 70 % (4). Zachovaný minimálny prietok krvi nedokáže zbaviť bunky myokardu stále narastajúcich množstiev produkovaného laktátu, čo ďalej prehlbuje vznikajúcu acidózu buniek. Narastajúca koncentrácia protónov (hodnoty pH môžu klesať značne pod 6,0) rezultuje v postupnej inhibícii aktivity enzýmu fosfofruktokinázy, čo vedie – popri rýchlo sa znižujúcich zásobách glykogénu – k výraznému spomaľovaniu anaeróbnej glykolýzy, čím kardiomyocyty strácajú jedinú možnosť získať energiu vo forme molekúl ATP (2). Takáto situácia nastáva veľmi rýchlo pri kompletnom prerušení prietoku krvi koronárnou artériou (obrázok 2).

Na priaznivý vplyv aktivácie glykolýzy vyvolanej ischemizáciou myokardu nejestvuje jednotný názor. Všeobecne sa uznáva, že „naštartovanie“ glykolytických procesov pri ischémii vyvolanej výrazným obmedzením prietoku krvi koronárnymi artériami býva spojené so znížením kontraktúry svalových vláken a so zlepšenou reštitúciou kontraktilných vlastností myokardu v poischemickej reperfúznej fáze (19, 20). Tieto názory podporujú i práce, v ktorých sa ukázalo, že podávanie glukózy s inzulínom zmenšuje infarcované ložisko a zmierňuje pokles množstiev kreatínfosfátu a ATP, ako aj hodnôt pH u zvieracích modelov, u ktorých sa vyvolala ischémia podviazaním koronárnej artérie (21, 22). Rovnaké priaznivé skúsenosti sa získali aj u pacientov s akútnym infarktom myokardu (23) aj pri kardiochirurgických výkonoch na otvorenom srdci (24).

Existujú však i opačné názory na význam „otvorenia sa“ glykolýzy pri ischémii myokardu. Pri pokusoch na izolovaných srdciach potkanov po ich kompletnej ischemizácii sa zistil priamy vzťah medzi kontraktilným deficitom a uvoľnením enzýmov po reperfúzii na jednej strane a hromadením laktátu v myokarde na strane druhej (25). Okrem toho sa ukázalo, že pri zvýšení intenzity anaeróbnej glykolýzy dochádza v kardiomyocytoch – v dôsledku akcelerovanej tvorby glyceraldehyd-3-fosfátu – k narastaniu tvorby triacylglycerolov; pri ich nasledujúcej oxidácii sa vyčerpávajú už i tak zdecimované rezervy ATP v ischemickom tkanive (26).

Metabolický kritický stav vyvolaný ťažkou ischémiou srdca sa prejavuje samozrejmým štiepením kreatínfosfátu, poklesom intracelulárnej koncentrácie ATP, ako aj prechodným zvýšením množstiev adenozíndi- a monofosfátu. Postupne však klesajú i celkové množstvá adenínových nukleotidov, hromadia sa ich degradačné produkty (27). Pre reverzibilnú obnovu metabolizmu a funkcie myokardu je rozhodujúce, aby pokles množstiev vysokoenergetických fosfátov neklesol pod kritické hodnoty. Bretschneider (28) predpokladá, že v myokarde psa tkanivové koncentrácie ATP okolo 4 mmol/g a kreatínfosfátu (približne 2 mmo/g) sú medznými hodnotami pre reverzibilitu metabolických procesov v poischemickej reperfúznej fáze. Tieto limitujúce hladiny ATP a kreatínfosfátu nie sú samozrejme absolútne, ale sa odlišujú podľa druhu experimentálneho objektu. Všeobecne však možno akceptovať, že 30 – 40 % zníženie množstva ATP a celkovej hladiny adenínových nukleotidov zabezpečuje ešte reverzibilitu obnovy metabolizmu v skorej poischemickej reperfúznej fáze (29).

Poruchy homeostázy iónov

Ischémia kardiomyocytov znamená výraznú zmenu v distribúcii a homeostáze niektorých iónov. Už krátko po vzniku ischémie sa výrazne zvyšuje intracelulárna koncentrácia sodíkových iónov (30). V dôsledku deplécie ATP a zvyšovanie koncentrácie H+ v ischemickom myokarde (31) dochádza k otvoreniu na ATP-senzitívneho K+-kanála, čím z buniek unikajú draslíkové ióny. Vyčerpanie zásob ATP inhibuje aktivitu Na+, K+-ATP-ázy, čo zabraňuje obnoveniu pôvodnej distribúcie sodíkových a draslíkových iónov. Akumuláciu Na+ zvyšuje i intracelulárna koncentrácia vodíkových iónov, ktorú bunky znižujú pomocou antiportového H+/Na+-výmenníkového systému (32). Kardiomyocyt sa snaží zbaviť hromadiaceho sa sodíka, a preto sa aktivuje Na+, Ca2+-výmenníkový systém. Tendencia bunky zbaviť sa nahromadených sodíkových iónov vyvoláva takto recipročnú akumuláciu divalentných vápnikových iónov, ktoré sa dostávajú do bunky i inými spôsobmi – cez poškodenú sarkolemálnu membránu, ako aj cez špecifické Ca2+-kanály (33) (obrázok 3). Zapojenie sarkolemálnej Ca2+-ATP-ázy – i keď jej kapacita v porovnaní s týmto enzýmom sarkoplazmového retikula je veľmi nízka (34) – v snahe odstrániť naakumulované množstvá vápnikových iónov sa potom prejavuje iba ďalšou rýchlou depléciou už i tak nízkych zásob ATP (33). Dominantou pre ďalší osud ischemického kardiomyocytu takto zostáva naakumulovaný Ca2+, ktorý vyvoláva výrazné metabolické a funkčné poruchy: dochádza k senzibilizácii myofilamentov, aktivácii viacerých proteináz, ako aj narušeniu funkcie mitochondrií, čo sa prejaví predovšetkým v nedostatočnej schopnosti syntetizovať ATP v poischemickom období (34). Zložité mechanizmy vedúce k akumulácii sodíka a vápnika v myocytoch demonštruje obrázok 3 (35).

Na záver možno povedať, že ischémia myokardu spôsobuje výrazné zmeny v energetickom metabolizme myocytov, ktoré majú vplyv na ich metabolizmus a funkčné procesy, čo sa prejaví predovšetkým v nasledujúcej reperfúznej fáze. Funkčná porucha mitochondrií, spôsobená naakumulovaným vápnikom, sa prejaví neschopnosťou rýchlej obnovy hotovosti ATP, prejavia sa poškodenia bunkových štruktúr i kontraktilného aparátu, čo – i pri zachovaní viability buniek – znamená výrazné spomalenie obnovy ich funkcie.

Literatúra

  1. Hearse DJ. Myocardial ischemia: can we agree on a definition for the 21st century? Cardiovasc Res 1994;28:1737-1744.
  2. Opie LH. Myocardial ischemia: Metabolic pathways and implications of increased glycolysis. Cardiovasc Drug Ther 1990;4:777-790.
  3. Nayler WG, Elz JS. Reperfusion injury: laboratory artifact or clinical dilemma? Circulation 1986;74:215-221.
  4. Stanley WC, Lopaschuk GD, Hall JL, McCormack JG. Regulation of myocardial carbohydrate metabolism under normal and ischemic conditions. Potential for pharmacological interventions. Cardiovasc Res 1997;33:243-257.
  5. Liedtke AJ, Nellis SH , Neely JR. Effect of excess free fatty acids on mechanical and metabolic function in normal and ischemia myocardium in swine. Circ Res 1978;43:652-661.
  6. Liedtke AJ, Nellis SH, Mjos OD. Effects of reducing fatty acid metabolism on mechanical function in regionally ischemia hearts. Am J Physiol 1984;247:H387-H394.
  7. Fedele FA, Gewirtz H, Cappone RJ, Sharaf B, Most AS. Metabolic response to prolonged reduction of myocardial blood flow distal to severe coronary artery stenosis. Circulation 1988;78:729-735.
  8. Pantely GA, Malone SA, Rhen WS, Anselone CG, Arai A, Bristow J, Bristow JD. Regeneration of myocardial phosphocreatine in pigs despite continued moderate ischemia. Circ Res 1990;67:1481-1493.
  9. Lerch R, Tamm C, Papageorgiou I, Benzi RH. Myocardial fatty acid oxidation during ischemia and reperfusion. Mol Cell Biochem 1992;116:103-109.
  10. Hansford RG, Cohen L. Relative importance of pyruvate dehydrogenase interconversion and feed-back inhibition in the effect of fatty acids on pyruvate oxidation by rat heart mitochondria. Arch Biochem Biophys 1978;191:65-81.
  11. Hall JL, Hernandez LA, Henderson J, Kellerman LA, Stanley WC. Decreased intersticial glucose and transmural gradient in lactate during ischemia. Basic Res Cardiol 1994;89:468-486.
  12. Lopaschuk GD, Stanley WC. Glucose metabolism in the ischemic heart. Circulation 1997;95:313-315.
  13. Young LH, Renfu Y, Russell R, Hu X, Caplan M, Ren M, Shulman GI, Sinusas AJ. Low-flow ischemia leads to translocation of canine heart GLUT-4 and GLUT-1 glucose transporters to the sarcolemma in vivo. Circulation 1997;95:415-422.
  14. Ren-fu Y, Hu X, Russell R, Young L. Translocation of glucose transporter isoforms in vivo: effects of hyperinsulinemia and low-flow ischemia in the canine heart. Circulation 1995;92(Suppl. I):I-765.
  15. Sun D, Nguyen N, DeGrado TJ, Schwaiger M, Brosius FC. Ischaemia induces translocation of the insulin-responsive glucose transporter GLUT-4 to the plasma membrane of cardiac myocytes. Circulation 1994;89:793-798.
  16. Taegtmeyer H. Energy metabolism of the heart: from basic concepts to clinical applications. Curr Prob Cardiol 1994;19:56-113.
  17. Alonso MD, Lomako J, Lomako WM, Whelan WJ. A new look at the biogenesis of glycogen. FASEB J 9;1995:1126-1137.
  18. Van Bilsen M, Van der Vusse GJ, Willemsen PHM, Coumans WA, Roemen THM, Reneman RS. Lipid alterations in isolated working rat hearts during ischaemia and reperfusion: Its relation to myocardial damage. Circ Res 1989;64:304-314.
  19. Bricknell OL, Opie LH. Effects of substrates on tissue metabolic changes in the isolated rat heart during underperfusion and on release of lactate dehydrogenase and arrhythmias during reperfusion. Circ Res 1978;43:102-115.
  20. Eberli FR, Weinberg EO, Grice WN, Horowitz GL, Apstein CS. Protective effect of increased glycolytic substrate against systolic and diastolic dysfunction and increased coronary resistance from prolonged global underperfusion and reperfusion in isolated rabbit hearts perfused with erythrocyte suspensions. Circ Res 1991;68:466-481.
  21. Maroko PR, Libby P, Sobel BE, Bloor CM, Sybers HD, Shell WE, Covell J W, Braunwald E. Effect of glucose-insulin-potassium infusion on myocardial infarction following experimental coronary artery occlusion. Circulation 1972;45:1160-1175.
  22. Opie LH, Owen P. Effect of glucose-insulin-potassium infusions on arteriovenous difference of glucose and of free fatty acids and on tissue metabolic changes in dogs with developing myocardial infarction. Am J Cardiol 1976;38:310-321.
  23. Rogers WJ, Stanley AW, Breinig JB, Prather JW, McDaniel HG, Moraski RE, Mantle JA, Russell RO, Rackley CE. Reduction of hospital mortality rate of acute myocardial infarction with glucose-insulin-potassium infusion. Am Heart J 1976;92:441-454.
  24. Gradinak S, Coleman GM, Taegtmeyer H, Sweeney M, Frazier H. Improved cardiac function with glucose-insulin-potassium after coronary bypass surgery. Ann Thorac Surg 1989;48:484-489.
  25. Tani M, Neely JR. Role of intracellular Na+ in Ca2+ overload and depressed recovery of ventricular function of reperfused ischemic rat hearts. Possible involvement of H+-Na+ and Na+-Ca2+ exchange. Circ Res 1989;65:1045-1056.
  26. Schooderwoerd K, van der Kraij T, Hulsman WC, Stam H. Hormones and triacylglycerol metabolism under normoxic and ischemic conditions. Mol Cell Biochem 1989;88:129-137.
  27. Isselhard W. Biochemistry: Index of the functional state of the heart? Br J Anesthesiol 1988;60:23S-27S.
  28. Brettschneider H J. Ueberlebenszeit und Wiederbelebung des Herzens bei normo- und Hypotermie. Verh Dtsch Gesellsch Kreislaufforsch. 1964;30:11-34.
  29. Merguet H. Wiederbelebung des Warmbluterherzens nach Ischämie unter Beobachtung von Funktion und Stoffwechselbefunden. Erg Chir Ortop 1971;55:71-122.
  30. Van Echteld CJA, Kirkels JH, Eijgelshoren MHJ, van der Meer P, Ruigrok TJC. Intracellular sodium during ischemia and calcium-free perfusion: a 23Na-NMR study. J Mol Cell Cardiol 1991;23:297-307.
  31. Dennis SC, Gevers W, Opie LH. Protons in ischemia: where do they come from, where do they go to? J Mol Cell Cardiol 1991;23:1077-1086.
  32. Ladilov YV, Siegmuns B, Piper HM. Protection of reoxygenated cardiomyocytes against hypercontracture by inhibition of Na+/H+ exchange. Am J Physiol 1995;37:H1531-H1539.
  33. Buja LM, Hagler HK, Willerson JT. Altered calcium homeostasis in the pathogenesis of myocardial ischemic and hypoxic injury. Cell Calcium 1988;9:205-217.
  34. Atar D, Gao WD, Marban E. Alternations of excitation-contraction coupling in stunned myocardium and in failing myocardium. J Mol Cell Cardiol 1995;27:783-791.
  35. Silverman HS, Stern MD. Ionic basis of ischaemic cardiac injury: insights from cellular studies. Cardiovasc Res 1994;28:581-597.
(c)1999 by Symekard s.r.o.