Niektoré aspekty energetického metabolizmu myokardu. I. časť.
Normoxický myokard
VIERA RENDEKOVÁ, IVAN PECHÁŇ*
Bratislava, Slovenská republika

Z Ústavu lekárskej chémie, biochémie a klinickej biochémie Lekárskej fakulty Univerzity Komenského v Bratislave a zo Slovenského ústavu srdcových a cievnych chorôb v Bratislave*
Do redakcie došlo dňa 11. 1. 1999; prijaté dňa 11. 5. 1999
Adresa pre korešpondenciu: Prof. MUDr. Ivan Pecháň, DrSc., Slovenský ústav srdcových a cievnych chorôb, Pod Krásnou hôrkou 1, 833 48 Bratislava


RENDEKOVÁ V, PECHÁŇ I. Niektoré aspekty energetického metabolizmu myokardu. I. časť. Normoxický myokard. Cardiol 1999;8(4):191–195
Prehľadný článok zaoberajúci sa špecifickými charakteristikami energetického metabolizmu normoxického myokardu. Uvádzajú sa regulačné mechanizmy, ktoré umožňujú kardiomyocytom získavať potrebnú energiu prevažne oxidáciou viacuhlíkových karboxylových kyselín, ako aj prijímať a využívať laktát a ketolátky. Komentuje sa aeróbna cesta tvorby primárneho zdroja energie – ATP, ako aj význam zásobných zdrojov energie – kreatínfosfátu a glykogénu.
Kľúčové slová: myokard – energetický metabolizmus – karboxylové kyseliny – laktát – ketolátky

RENDEKOVÁ V, PECHÁŇ I. Some aspects of myocardial energy metabolism. Part I. Normoxic myocardium. Cardiol 1999;8(4):191–195
The article reviews available information on specific characteristics of myocardial energy metabolism of normoxic myocardium. Regulatory mechanisms that permit the cardiomyocytes to obtain the neccessary energy predominantly by oxidation of fatty acids as well as to receive and to utilize lactate and ketone bodies are presented. Aerobic pathways of ATP formation as a primary energy source as well as the significance of phosphocreatine and glycogen as energy supplies are discussed.
Key words: Myocardium – Energy metabolism – Fatty acids – Lactate – Ketone bodies


Špecifické prejavy metabolizmu myokardu

Bunky myokardu sa neodlišujú svojím metabolizmom od iných buniek organizmu, plne využívajú všeobecne existujúce metabolické cesty a ich zložité regulačné mechanizmy. Predsa však možno identifikovať niektoré špecifické prejavy, ktoré sú pre tkanivo myokardu charakteristické a ktoré vyplývajú zo špecifickej funkcie kardiovaskulárneho systému a predovšetkým samotného srdca a charakteru jeho funkcie v organizme. Tieto špecifiká, ktorými sa kardiomyocyty vyznačujú a odlišujú od iných buniek, najmä funkčne menej dôležitých orgánov, možno zhrnúť do niekoľkých charakteristických poznatkov:

a) Bunky myokardu sú typické vysokým stupňom aeróbneho metabolizmu. Charakterizuje ho vysoká spotreba kyslíka myokardom, ktorá je v prepočítaní na hmotnosť tkaniva dvojnásobne vyššia ako v pečeni a obličke (1).

b) Na rozdiel od niektorých funkčne vysoko aktívnych tkanív a orgánov, hlavným energetickým zdrojom myokardu pri normoxických podmienkach sú karboxylové kyseliny, ktorých podiel na spotrebe kyslíka a na tvorbe ATP predstavuje 60 – 100 % v porovnaní s glukózou a laktátom, ktoré sa na tejto spotrebe zúčastňujú 0 – 20 % (2 – 4). Podiel karboxylových kyselín a ketolátok na úkor glukózy pri získavaní energeticky bohatých látok myokardom sa zvyšuje napr. pri diabetes mellitus (5), pri vysokých plazmatických hladinách karboxylových kyselín pri podmienkach hladovania (4, 6) a počas fázy zotavenia po extrémnej telesnej námahe.

c) Typickým prejavom normoxického myokardu je schopnosť prijímať a metabolizovať laktát, ktorý pri optimálnych podmienkach perfúzie srdca môže predstihnúť proces glykolýzy ako zdroj pyruvátu (7). Transport laktátu cez membránu sarkolemy sa uskutočňuje špeciálnymi transportnými systémami: stereoselektívnym transportným proteínom, ktorý sa identifikoval ako monokarboxylátový transportér-1 (MCT-1) s relatívnou molekulovou hmotnosťou 45 000 (8) a dalším podobným laktát-H+ kotransportérom, ktorý sa zistil v membránach viacerých druhov buniek (9), ale i v myokarde a izolovaných sarkolemálnych vezikulách (10, 11). Tieto transportéry sú zrejme i limitujúcim faktorom pre výstup laktátu z bunky počas ischémie (12).

d) Bunky myokardu dokážu efektívne získavať energiu i oxidáciou ketolátokacetoacetátu a 3-hydroxybutyrátu. Podiel týchto látok na spotrebe kyslíka myokardom predstavuje pri fyziologických podmienkach asi 4 % (1), pri zvýšenej ketogenéze a tým i ich zvýšenej hladine v krvi i viac. Acetoacetát sa v kardiomyocytoch katalytickým účinkom sukcinyl-CoA-acetoacetáttransferázy mení na acetoacetyl-CoA, ten pôsobením tiolázy na acetyl--CoA, ktorý sa potom oxiduje v citrátovom cykle (13) (obrázok 1).

Hlavné energetické zdroje normoxického myokardu a regulácia ich metabolizmu

Ako sa už spomenulo, hlavným energetickým zdrojom kardiomyocytov pri normoxii sú viacuhlíkové karboxylové kyseliny, ktoré myokard intenzívne prijíma a odbúrava v mitochondriách ß-oxidáciou (obrázok 2). Prednostná oxidácia karboxylových kyselín pred využívaním glukózy ako hlavného energetického substrátu spočíva v ich priamom inhibičnom pôsobení na proces oxidácie glukózy (14), pričom medzi uvažovanými mechanizmami tohto procesu sa uvádzajú:

• Inhibícia fosfofruktokinázy citrátom (15), i keď prechod citrátu z mitochondrií do cytosolu je v srdci na rozdiel od pečene výrazne ovplyvnený veľmi nízkou aktivitou prenášača trikarboxylových kyselín v myokardiálnych mitochondriách (16).

• Podstatnejší význam má inhibičné pôsobenie vysokého pomeru medzi acetyl-CoA a CoA na aktivitu pyruvátdehydrogenázového komplexu (17) (obrázok 3). Vysoké koncentrácie acetyl-CoA a NADH v mitochondriách aktivujú totiž príslušnú kinázu, ktorá fosforyluje pyruvátdehydrogenázu a tým inhibuje jej aktivitu (18, 19). O pyruvátdehydrogenáze ako o kľúčovom mieste na uprednostnenie oxidácie karboxylových kyselín pred oxidáciou glukózy v myokarde svedčia i poznatky získané pri farmakologickom potlačení aktivity karnitínpalmitoyltransferázy I, čím sa inhibuje transport acylderivátov CoA do mitochondrií a ich nasledujúca oxidácia. Rezultuje to v narastaní oxidácie glukózy pri znížených koncentráciách acetyl-CoA a „odbrzdením“ inhibovanej pyruvátdehydrogenázy (16).

• Dôležitým regulačným mechanizmom je i malonyl--CoA, ktorý je silným inhibítorom karnitínpalmitoyltransferázy I (20). Ide o cytosólový metabolit, ktorý sa tvorí karboxyláciou acetyl-CoA enzýmom acetyl-CoA-karboxylázou. Inhibícia karnitínpalmitoyltransferázy I pomocou malonyl-CoA znamená zníženie transportu acyl-CoA z cytosólu do mitochondrie a tým i zníženú ponuku substrátov pre ß-oxidáciu. Takto dochádza i k zníženiu tvorby acetyl-CoA, čo znamená jeho zníženie koncentrácie v mitochondriách a zníženie aktivácie kinázy pyruvátdehydrogenázy, ktorá fosforyluje vlastnú pyruvátdehydrogenázu a tým sa inaktivuje. Odstránenie príčiny inhibície tohto základného enzýmu teda otvára cestu pre oxidáciu glukózy glykolyticky a cez oxidáciu a dekarboxyláciu pyruvátu mu umožňuje vo forme acetyl-CoA vstup do citrátového cyklu.

Uprednostnenie karboxylových kyselín ako zdrojov pre tvorbu energeticky bohatých látok v myokarde sa teda dôkladne reguluje a závisí od ponuky týchto substrátov i od dostatočnej dodávky kyslíka tkanivu. Popri uvedených mechanizmoch sa zúčastňuje regulácie oxidácie substrátov v kardiomyocyte i laktát, ktorý táto bunka aktívne prijíma. Ak je jeho dodávka do buniek myokardu vyššia (pri zvýšených hladinách plazmatického laktátu, napr. pri výdatnej telesnej námahe), laktát sa aktívne zúčastňuje tvorby energie v bunkách tým, že znižuje oxidáciu karboxylových kyselín predovšetkým stimuláciou tvorby malonyl-CoA z acetyl-CoA (21) a tým sa zúčastňuje inhibície karnitínpalmitoyltransferázy, ktorá zabezpečuje transport dlhoreťazcových karboxylových kyselín do mitochondrií, kde prebieha ich oxidácia.

Energetická hotovosť normoxického myokardu

Pri aeróbnych podmienkach predstavuje proces oxidačnej fosforylácie, ktorý prebieha v mitochondriách, rozhodujúci zdroj molekúl ATP v kardiomyocytoch.

Proces oxidácie látok v mitochondriálnom dýchacom reťazci je kontrolovaný viacerými kontrolnými mechanizmami. Pretože tento proces je úzko spätý s tvorbou primárneho zdroja energie – ATP, dominujúcim kontrolným faktorom je koncentrácia ADP, z ktorého sa ATP tvorí. V prípade zvýšenej potreby energetických zásob sa na kontrole tohto procesu zúčastňuje i aktuálna koncentrácia anorganického fosfátu (iP) (13). Tento kontrolný mechanizmus bunkového dýchania sa označuje i ako „ADP/iP-limitovaná“ doména (22).

Dostatočné množstvá vytvorených redukovaných ekvivalentov, najmä NADH, sú predpokladom pre permanentne prebiehajúci proces oxidačnej fosforylácie v mitochondriách myokardu. Pri určitých podmienkach dostatočné množstvá NADH môžu byť tiež jedným z kontrolných mechanizmov prebiehajúcej oxidácie v mitochondriách („nonADP/iP-limitovaná“ doména) (22). Okrem týchto mechanizmov sa na kontrole v mitochondriálnej respirácie zúčastňuje aj vnútrobunková koncentrácia vápnika (23), ktorá môže určovať i dominantný typ respiračnej kontroly (24).

Množstvá energetických zásob v myokarde sú relatívne veľké – ATP v rozmedzí 5 – 7 mmol/g, pričom hodnota celkového energetického náboja, ktorý zahrňuje celé spektrum adenínových nukleotidov, sa pohybuje okolo 9,0 (25). Relatívne konštantnú pokojovú koncentráciu ATP v myokarde citlivo reguluje dostatočná zásoba kreatínfosfátu, ktorého množstvo sa pohybuje okolo 6 µmol/g vlhkého tkaniva myokardu (1). Množstvá ATP sa ustavične dopľňajú zo zásob kreatínfosfátu v oboch smeroch prebiehajúcou chemickou reakciou katalyzovanou enzýmom kreatínkinázou. Rovnovážny stav medzi koncentráciami oboch týchto energeticky významných fosfátov odráža vyváženosť medzi ich syntézou a dodávkou na jednej strane a ich potrebou a využitím na strane druhej. Treba však povedať, že tento rovnovážny stav nie je absolútne stály. Pri fyziologických podmienkach ho výrazne ovplyvňuje zaťaženie srdca a aktuálna energetická potreba buniek myokardu. Prejavuje sa to predovšetkým na množstve kreatínfosfátu. Už dávnejšie sa vie, že koncentrácia tejto zlúčeniny je nepriamo korelovaná s pracovným zaťažením ľavej komory srdca, pričom jej koncentráciu výraznejšie ovplyvňujú tlakové než objemové zmeny (26). Napríklad desaťnásobná zmena tlakovo-objemového zaťaženia srdca zmenou iba objemového zaťaženia vyvoláva kolísanie množstiev kreatínfosfátu medzi 6 a 12 µmol/g, kým koncentrácie ATP sa menia iba v rozmedzí 5 % (25). V normálnom srdci vysoké koncentrácie kreatínfosfátu odrážajú obvykle nízku energetickú potrebu myocytov, ale môžu byť aj výsledkom tzv. utilizačnej insuficiencie, a to bez zreteľa na skutočnú energetickú potrebu buniek (25).

Už dávnejšie sa traduje hypotéza o vnútrobunkovej kompartmentácii hotovosti ATP, ktorá hovorí o existencii tzv. glykolytickej tvorby ATP, využiteľného špecificky na udržiavanie funkcie membrán napr. pri ischémii (27, 28). Ukazuje sa však, že táto kompartmentácia pre normálny normoxický myokard neplatí a že ATP, potrebné pre špecifické membránové funkčné procesy, pochádza tiež z mitochondrií, pretože pri normálnom zásobení myokardu kyslíkom transportné systémy pre ATP v bunke pracujú na dostatočnej funkčnej úrovni (28).

Dôležitým energetickým zásobným zdrojom srdca je i glykogén, ktorého množstvo v ľudskom myokarde sa pohybuje v rozmedzí 40 – 60 µmol glukózových jednotiek na 1 gram tkaniva (29). Jeho relatívne vysoká koncentrácia v myokarde je zrejme i dôsledkom nižšieho zastúpenia oxidácie glukózy vzhľadom na dominantné využívanie oxidácie karboxylových kyselín v procese tvorby energetických zásob v tomto druhu tkaniva. Príjem glukózy myocytmi sa reguluje transmembránovým glukózovým gradientom a množstvom i aktivitou transportérov glukózy (GLUT) (16), z ktorých sa v myokarde identifikovali dve ich izoformy – GLUT-1 a GLUT-4 (30). Tieto transportéry, ktoré sa nachádzajú v sarkolemálnych membránach a mikrozomálnych vezikulách, sa pôsobením inzulínu (ale aj pri ischémii) premiestňujú do plazmatických membrán a umožňujú tak vstup glukózy do bunky (31, 32). Inzulín reguluje i dalšie cesty syntézy glykogénu: z vonkajšej mitochondriálnej membrány uvoľňuje a aktivuje enzým hexokinázu, ktorá fosforyluje molekulu glukózy na glukózu-6-fosfát, zvyšuje aktivitu glykogénsyntázy a ukladanie glykogénu v myocytoch (4, 33). Zvýšené plazmatické hladiny glukózy a inzulínu u kardiochirurgických pacientov zvyšovali obsah glykogénu v ich myokarde, rovnako i vysoké hladiny karboxylových kyselín a ich zvýšená oxidácia v mitochondriách, k čomu dochádza pri hladovaní a pri zotavovaní sa po vyčerpávajúcej svalovej námahe.

Na záver možno povedať, že uvedené špecifické prejavy energetického metabolizmu v myokarde umožňujú srdcu lepšiu adaptabilitu na zmeny jeho záťaže i pri fyziologických podmienkach a ich existenciu možno využiť i pri farmakologickom ovplyvňovaní zdravého, najmä však funkčne a morfologicky zmeneného srdca.

Literatúra

  1. Schenk M, Kolb E. Základy fyziologickej chémie. Bratislava: Príroda 1991:648.
  2. Bing RJ, Siegel A, Vitale A, et al. Metabolic studies on the human heart in vivo. I. Studies on carbohydrate metabolism of the human heart. Am J Med 1953;15:284-296.
  3. Camici P, Ferranini E, Opie H. Myocardial metabolism in ischemia heart disease: basic principles and application to imaging by positron emission tomography. Prog Cardiovasc Dis 1989;32:217-238.
  4. Taeftmeyer H. Energy metabolism of the heart: from basic concepts to clinical applications. Curr Prob Cardiol 1994;19:59-113.
  5. Stanley WC, Lopaschuk GD, McCormack JG. Regulation of energy substrate metabolism in the diabetic heart. Cardiovasc Res 1997;34:25-33.
  6. Neely JR, Morgan HE. Relationship between carbohydrate and lipid metabolism and the energy balance of heart muscle. Annu Rev Physiol 1974;36:59-113.
  7. Stanley WC. Myocardial lactate metabolism during exercise. Med Sci Sport Exerc 1991;23:920-924.
  8. Garcia C, Goldstien JL, Pathak RK, et al. Molecular characterization of a membrane transporter tor lactate, pyruvate, and other monocarboxylates. Implication for the Cori cycle. Cell 1994;76:865-874.
  9. Poole RC, Halestrap APOD. Transport of lactate and other monocarboxylates across mammalian plasma membranes. Am J Physiol 1993;264:C761-C782.
  10. Mann GE, Zlokovic BV, Yudilevich DL. Evidence for a lactate transport system in the sarcolemmal membrane of the perfused rabbit heart: kinetics of unidirectional influx. Biochem Biophys Acta 1985;819:241-248.
  11. Trosper TL, Philipson KD. Lactate transport by cardiac sarcolemmal membrane vesicles. Am J Physiol 1987;252:C483-C489.
  12. Wang X, Levi AJ, Halestrap AP. Kinetics of the sarcolemmal lactate carrier in single heart cells using BCECF to measure pHi. Am J Physiol 1994;267:H1759-H1769.
  13. Murray RK, Granner DK, Mayes PA, Roidwell VW. Harper’s Biochemistry. 24th Ed. Stanford: Appleton and Lange 1996:868.
  14. Saddik M, Lopaschuk GD. Myocardial triglyceride turnover and contribution to energy substrate utilization in isolated working rat hearts. J Biol Chem 1991;266:8162-8170.
  15. Garland PB, Randle PJ, Newsholme EA. Citrate as an intermediary in the inhibition of PFK in rat heart muscle by FA, ketone bodies, pyruvate, diabetes and starvation.Nature 1963;200:169-170.
  16. Stanley WC, Lopaschuk GD, Hall JL, et al. Regulation of myocardial carbohydrate metabolism under normal and ischemic condition. Potential for pharmacological interventions. Cardiovasc Res 1997;33:243-257.
  17. Weiss RG, Chaclo VP, Gerstenblith G. Fatty acid regulation of glucose metabolism in the intact beating rat heart assessed by carbon-13 NMR spectroscopy: the critical role of pyruvate dehydrogenase. J Mol Cell Cardiol 1989;21:469-478.
  18. Randle PJ. Fuel selection in animals. Biochem Soc Trans 1986;14:799-806.
  19. Kruszynska YT, McCormack JG, McIntyre N. Effects of glycogen stores and nonesterified fatty acid availability on insulin-stimulated glucose metabolism and tissue pyruvate dehydrogenase activity in the rat. Diabetologia 1991;34:205-211.
  20. Awan AA, Saggerson ED. Malonyl-CoA metabolism in cardiac myocytes and its relevance to the control of fatty acid oxidation. Biochem J 1993;295:61-66.
  21. Beynen AC, Buechler KF, van den Molen AJ, et al. The effects of lactate and acetate on fatty acid and cholesterol synthesis by isolated rat hepatocytes. Int J Biochem 1982;14:165-169.
  22. From AHL, Zimmer SD, Michurski SP, et al. Regulation of the oxidative phosphorylation rate in the intact cell. Biochemistry 1990;29:3731-3743.
  23. Koretsky AP, Katz LA, Balaban RS. The mechanism of respiratory control in the in vivo heart. J Mol Cell Cardiol 1989;21(Suppl I):59-66.
  24. Moreno-Sanchez R, Houge BA, Hansford RG. Influence of NAD-linked dehydrogenase activity on flux through oxidative phosphorylation. Biochem J 1990;268:412-428.
  25. Isselhard W. Biochemistry: index for the functional state of the heart? Br J Anaesth 1988;60:23S-27S.
  26. Hochrein H, Doering HJ. Die energiereiche Phosphate des Myokards bei Variation der Belastungsbedingungen. Pflueger’s Arch Ges Physiol 1960;271:548-563.
  27. Opie LH. Metabolism of the heart. II.Metabolism of triglycerides. Substrates for oxidative metabolism. Mitochondrial metabolism. Synthetic reactions. Excitation coupling. Am Heart J 1969;77:100-122.
  28. Opie LH. Myocardial ischemia - metabolic pathways and implications of increased glycolysis. Cardiovasc Drug Ther 1990;4:777-790.
  29. Van der Vusse GJ, Reneman RS. Glycogen and lipids (endogenous substrates). In: Drake-Holland AJ, Noble NIM. Cardiac metabolism. New York:Willey 1983;215-237.
  30. Bell GI, Kayano T, Buse JB, et al. Molecular biology of mammalian glucose transporters. Diabetes Care 1990;13:198-208.
  31. Sun D, Nguyen N, De Grado TJ, et al. Ischemia induces translocation of the insulin-responsive glucose transporter GLU 4 to the plasma membrane of cardiac myocytes. Circulation 1994;89:793-798.
  32. Slot JW, Gauze HJ, Gigengack S, et al. Translocation of the glucose transporter GLU 4 in cardiac myocytes of the rat. Proc Natl Acad Sci USA 1991;88:7815-7819.
  33. Alonso MD, Lomako J, Lomako WM, et al. A new look at the biogenesis of glycogen. FASEB J 1995;9:1126-1137.
(c)1999 by Symekard s.r.o.